正式测定前务必取 2-3个预期差异较大的样本做预测定

测定意义：

糖类物质是构成植物体的重要组成成分之一，也是新陈代谢的主要原料和贮存物质。可溶性糖是指样品中的还原单糖及在本法测定条件下能水解成还原单糖的蔗糖、麦芽糖和可部分水解为葡萄糖的淀粉。

测定原理：

蒽酮比色法。可用于可溶性单糖、寡糖和多糖的含量测定，具有灵敏度高﹑简便快捷﹑适用于微量样品的测定等优点。

需自备的仪器和用品：

可见分光光度计/酶标仪、沸水浴、可调式移液器、微量石英比色皿/96孔板、浓硫酸(不允许快递)研钵、和蒸馏水。

试剂的组成和配制：

试剂一：粉剂×1瓶，4℃避光保存；

试剂二：5mL×1瓶 ，4℃保存；

样品中可溶性糖的提取：

称取 0.1～0.2g样本，加入 1mL蒸馏水研磨成匀浆，倒入有盖离心管中，95℃水浴 10min(盖紧，以防止水分散失)，冷却后，8000g，25℃离心 10min，取上清液于 10ml试管中，用蒸馏水定容至 10mL，摇匀备用。

测定步骤：

1、分光光度计或酶标仪预热 30min以上，调节波长至 620nm，蒸馏水调零。

2、调节水浴锅至 95度。

3、工作液的配制：在试剂一中加入 2.5mL试剂二。充分溶解后使用，如较难溶解，可加热搅拌；用不完的试剂 4℃保存一周；

4、加样表(在 EP管中反应)：

混匀，置 95度水浴中 10min(盖紧，以防止水分散失)，冷却至室温后，取 200  uL转移至微量石英比色皿或 96孔板中，于 620nm处，分别读取空白管和测定管吸光值，ΔA=A测定管-A空白管。

注意：

1、空白管只要做一管。

2、如果 ΔA大于 1，需要将样本用蒸馏水稀释，计算公式中乘以相应稀释倍数。

3、由于浓硫酸具有强腐蚀性，请谨慎操作。

可溶性糖含量计算：

1、标准条件下测定的回归方程为 y = 8.55x - 0.07；x为标准品浓度(mg/mL)，y为吸光值。

2、按样本鲜重计算：

可溶性糖(mg/g鲜重)= [(ΔA＋0.07)÷8.55×V1]÷(W×V1÷V2)=1.17×(ΔA＋0.07)÷W。

3、按样本蛋白浓度计算：

可溶性糖(mg/mg prot)=[ (ΔA＋0.07)÷8.55×V1]÷(V1×Cpr)=0.117×(ΔA＋0.07)÷Cpr。

V1：加入样本体积，0.04mL；V2：加入提取液体积，10mL； Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL； W：样本鲜重，g。

1、标准条件下测定的回归方程为 y = 4.275x - 0.07；x为标准品浓度(mg/mL)，y为吸光值。

2、按样本鲜重计算：

可溶性糖(mg/g鲜重)= [(ΔA＋0.07)÷4.275×V1]÷(W×V1÷V2)=2.34×(ΔA＋0.07)÷W。

3、按样本蛋白浓度计算：

可溶性糖(mg/mg prot)= [(ΔA＋0.07)÷4.275×V1]÷(V1×Cpr)=0.234×(ΔA＋0.07)÷Cpr。

V1：加入样本体积，0.04mL；V2：加入提取液体积，10mL； Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL； W：样本鲜重，g。

注意：最低检测限为 1mg/g 鲜重或 10ng/ mg prot