产品介绍 正式测定前务必取 2-3个预期差异较大的样本做预测定 测定意义: 蔗糖酶(EC 3.2.1.26)是碳水化合物消化吸收的关键酶之一,能够水解蔗糖变成相应的单糖而被机体吸收。 测定原理: 本试剂盒采用 3.5-二硝基水杨酸法测定蔗糖酶催化产生的还原糖的含量,由此可得出蔗糖酶水解速度。其原理是 3.5-二硝基水杨酸与还原糖共热被还原成棕红色的氨基化合物,在一定范围内还原糖的量和反应液的颜色深度成正比。此法操作简便、迅速、杂质干扰较小。 所需的仪器和用品: 可见分光光度计/酶标仪、沸水浴、移液器、微量石英比色皿/96孔板、研钵、冰和蒸馏水。 试剂的组成和配制: 提取液:液体 100ml×1瓶,4℃保存; 试剂一:液体 2ml×1瓶,4℃保存; 试剂二:粉剂×1支 ,4℃保存,用时加入 1ml蒸馏水充分溶解待用;用不完的试剂 4℃保存; 试剂三:液体 3ml×1瓶,常温保存; 样品测定的准备: 按照组织质量(g):提取液体积(ml)为 1:5~10的比例(建议称取约 0.1g组织,加入 1ml提取液),进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。 测定步骤: 1、分光光度计或酶标仪预热 30min以上,调节波长至 520nm,蒸馏水调零。 2、样本测定,(在 EP管中依次加入下列试剂):
置于 25℃准确水浴 10min
混匀, 95℃水浴 5min左右(盖紧,防止水分散失),冷却至室温
混匀,取 200μL至微量石英比色皿或 96孔板中测定各管 520nm吸光值,ΔA=A测定-A对照,每个测定管需设一个对照管。 蔗糖酶活力计算: a.用微量石英比色皿测定的计算公式如下 1、标准条件下测定的回归方程为 y = 0.1296x -0.12;x为标准品浓度(mg/ml),y为吸光值。 2、按照蛋白浓度计算 单位定义:每 mg组织蛋白每分钟催化水解 1μg蔗糖定义为一个酶活力单位。 蔗糖酶活力(μg/min/mg prot)=[1000×(ΔA+0.12)÷0.1296×V1]÷(V1×Cpr)÷T=771×(ΔA+0.12)÷Cpr。 3、按样本鲜重计算 单位定义:每 g组织每分钟催化水解 1μg蔗糖定义为一个酶活力单位。 蔗糖酶活力(μg/min/g鲜重)=[1000×(ΔA+0.12)÷0.1296×V1]÷(W×V1÷V2)÷T=771×(ΔA +0.12)÷W。 1000:1mg/ml=1000μg/ml;V1:加入反应体系中样本体积,0.03ml;V2:加入提取液体积,1ml;T:反应时间,10min; Cpr:样本蛋白质浓度,mg/ml;W:样本鲜重,g。b.用 96孔板测定的计算公式如下 1、标准条件下测定的回归方程为 y = 0.0648x -0.12;x为标准品浓度(mg/ml),y为吸光值。 2、按照蛋白浓度计算 单位定义:每 mg组织蛋白每分钟催化水解 1μg蔗糖定义为一个酶活力单位。 蔗糖酶活力 (μg/min/mg prot)=[1000×(ΔA+0.12)÷0.0648×V1]÷(V1×Cpr)÷T=1542×(ΔA+0.12)÷Cpr。 3、按样本鲜重计算 单位的定义:每 g组织每分钟催化水解 1μg蔗糖定义为一个酶活力单位。 蔗糖酶活力(μg/min/g鲜重)=[1000×(ΔA+0.12)÷0.0648×V1]÷(W×V1÷V2)÷T=1543×(ΔA +0.12)÷W。 1000:1mg/ml=1000μg/ml;V1:加入反应体系中样本体积,0.03ml;V2:加入提取液体积,1ml;T:反应时间,10min; Cpr:样本蛋白质浓度,mg/ml;W:样本鲜重,g。 |
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